昆 蟲 谷 胱 甘 肽S 轉 移 酶(GST) 酶 聯 免 疫 分 析
試 劑 盒 使 用 說 明 書
本試劑盒僅供研究使用。
檢 測 范 圍 ： 96T
25ng/L –850ng/L
使 用 目 的 ：
本試劑盒用于測定昆蟲組織，細胞及其它相關樣本中谷胱甘肽 S 轉移酶(GST)含量。
實 驗 原 理
本試劑盒應用雙抗體夾心法測定標本中昆蟲谷胱甘肽 S 轉移酶(GST)水平。用純化的昆
蟲谷胱甘肽 S 轉移酶(GST)抗體包被微孔板，制成固相抗體，往包被單抗的微孔中依次加入
昆蟲谷胱甘肽 S 轉移酶(GST)，再與 HRP 標記的谷胱甘肽 S 轉移酶(GST)抗體結合，形成抗
體-抗原-酶標抗體復合物，經過*洗滌后加底物 TMB 顯色。TMB 在 HRP 酶的催化下轉
化成藍色，并在酸的作用下轉化成終的黃色。顏色的深淺和樣品中的昆蟲谷胱甘肽 S 轉
移酶(GST)呈正相關。用酶標儀在 450nm 波長下測定吸光度（OD 值），通過標準曲線計算樣
品中昆蟲谷胱甘肽 S 轉移酶(GST)濃度。
試 劑 盒 組 成
1 30 倍濃縮洗滌液 20ml×1 瓶 7 終止液 6ml×1 瓶
2 酶標試劑 6ml×1 瓶 8 標準品（1600 ng/L） 0.5ml×1 瓶
3 酶標包被板 12 孔×8 條 9 標準品稀釋液 1.5ml×1 瓶
4 樣品稀釋液 6ml×1 瓶 10 說明書 1 份
5 顯色劑 A 液 6ml×1 瓶 11 封板膜 2 張
6 顯色劑 B 液 6ml×1/瓶 12 密封袋 1 個
標 本 要 求
1．標本采集后盡早進行提取，提取按相關文獻進行，提取后應盡快進行實驗。若不能
馬上進行試驗，可將標本放于-20℃保存，但應避免反復凍融
2．不能檢測含 NaN3 的樣品，因 NaN3 抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。
操 作 步 驟
1. 標準品的稀釋：本試劑盒提供原倍標準品一支，用戶可按照下列圖表在小試管中進行稀
釋。
800ng/L 5 號標準品 150µl 的原倍標準品加入 150µl 標準品稀釋液
400ng/L 4 號標準品 150µl 的 5 號標準品加入 150µl 標準品稀釋液
200ng/L 3 號標準品 150µl 的 4 號標準品加入 150µl 標準品稀釋液
100ng/L 2 號標準品 150µl 的 3 號標準品加入 150µl 標準品稀釋液
50ng/L 1 號標準品 150µl 的 2 號標準品加入 150µl 標準品稀釋液
2. 加樣：分別設空白孔（空白對照孔不加樣品及酶標試劑，其余各步操作相同）、標準孔、
待測樣品孔。在酶標包被板上標準品準確加樣 50µl，待測樣品孔中先加樣品稀釋液 40µl，
然后再加待測樣品 10µl（樣品終稀釋度為 5 倍）。加樣將樣品加于酶標板孔底部，盡
量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻。
3. 溫育：用封板膜封板后置 37℃溫育 30 分鐘。
4. 配液：將 30 倍濃縮洗滌液用蒸餾水 30 倍稀釋后備用
5. 洗滌：小心揭掉封板膜，棄去液體，甩干，每孔加滿洗滌液，靜置 30 秒后棄去，如此
重復 5 次，拍干。
6. 加酶：每孔加入酶標試劑 50µl，空白孔除外。
7. 溫育：操作同 3。
8. 洗滌：操作同 5。
9. 顯色：每孔先加入顯色劑 A50µl，再加入顯色劑 B50µl，輕輕震蕩混勻，37℃避光顯色
10 分鐘.
10. 終止：每孔加終止液 50µl，終止反應（此時藍色立轉黃色）。
11. 測定：以空白空調零，450nm 波長依序測量各孔的吸光度（OD 值）。 測定應在加終止
液后 15 分鐘以內進行。 |
